一、液體樣品 1. 將約 2 μL 液體樣品（如全血、細胞培養液、病毒樣品、糞便樣品）加入到 50 μL 免 提取核酸釋放劑中。（注意：總液體樣品用量不要超過本產品用量的 1/10。） 2. 室溫放置 3 分鐘；對于較難裂解的樣品（如有厚壁的真菌等），則保溫時間可以延長 到 10-30 分鐘。 3. 簡短振蕩混勻后取樣品裂解液直接進行 PCR 擴增或其他擴增。（注：裂解液體積最好不要超過反應體積的 1/10，對 50μL 的擴增體系，加入的裂解液不要超過5μL。由于不同的擴增體系成分不同，建議做梯度測試以確定最佳反應體系）二、組織樣品 1. 將或 2 mg 的固體樣品（如動物組織、植物葉片、種子等）加入到 50 μL 免提取核酸 釋放劑中。 （注意：總樣品量不要超過 1 mg/10 μL 的比例。） 2. 95℃加熱 5 分鐘；對于較難裂解的樣品（如石蠟組織切片、血斑等），則保溫時間可 以延長到 10-30 分鐘。 3. 簡短振蕩混勻后取樣品裂解液直接進行 PCR 擴增或其他擴增。 （注：裂解液體積最好不要超過反應體積的 1/10，對 50μL 的擴增體系，加入的裂解液不要超過 5μL。由于不同的擴增體系成分不同，建議做梯度測試以確定最佳反應體系）
1、細菌培養時間一般為 12 ~ 16 小時，如接種量大則應減少培養時間，過度培養會降低質 粒質量甚至導致質粒 DNA 突變； 2、每次使用時都要注意 Buffer S2 和 S3 是否形成沉淀，如有沉淀 37℃溶解后再用； 3、注意 Buffer S1，S2 和 S3 的用量比例，若細菌量增大，需按比例放大這些溶液的使用量； 4、質粒的產量跟細菌量、質?？截悢?、質粒大小和操作規范程度密切相關，一般 1.5 ml 過夜培養菌體可收獲約 10 ug 高拷貝質粒。
1、細菌培養時間一般為 12 ~ 16 小時，如接種量大則應減少培養時間，過度培養會降低 質粒質量甚至導致質粒 DNA 突變； 2、 每次使用時都要注意 Buffer S2 和 S4 是否形成沉淀，如有沉淀 37℃溶解后再用； 3、 質粒的產量跟細菌量、質?？截悢?、質粒大小和操作規范程度密切相關。
1、Buffer BL 的加入能夠改善吸附柱的吸附能力并提高吸附柱的均一性和穩定性，消除高 溫潮濕或其他不良環境因素對吸附柱造成的影響。 2、 使用前請先檢查 Buffer BL、Buffer GN 是否出現渾濁，如有混濁現象，可在 37℃水浴 中加熱幾分鐘，即可恢復澄清。 3、 溶液 Buffer GN 含有 pH 指示劑，黃色，指示 pH≤7.5。 ? 切膠時，紫外照射時間應盡量短，以免對 DNA 造成損傷。 4、 回收率與初始 DNA 量和洗脫體積有關，初始量越少、洗脫體積越小，回收率越低。
1、 如 Buffer GTL 和 Buffer GL 產生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2、 樣品應避免反復凍融，否則會導致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3、 所有離心步驟均為臺式離心機，室溫下操作； 4、按要求在 Buffer W1 和 Buffer W2 中加入無水乙醇。
1、如 Buffer GTL 和 Buffer GL 產生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2、 樣品應避免反復凍融，否則會導致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3、 所有離心步驟均為臺式離心機，室溫下操作。